Untersuchungsmaterial

In Paraffin eingebettete Gewebeproben.

Ziel der Untersuchung

Die hier beschriebene Färbemethode dient unter anderem zur Darstellung von Nissl-Substanz in Paraffinschnitten oder erythropoetischen Zellen in Blutausstrichen. Hier wird die Färbung an Paraffinschnitten erklärt.

Prinzip der Färbung

Der basische Teerfarbstoff Methylenblau verbindet sich elektropolar mit den negativ geladenen RNS der Nissl-Substanz und der DNS der Kerne. Es wird ein Puffer verwendet  (pH-Wert sauer), wobei nur Nissl-Substanz, Kerne und Nukleoli negative Ladungen tragen. Da die Farblösung mit einem Puffer versehen wird, liegt eine Endpunktfärbung vor. Der pH-Wert der Lösung wird auf 4,5 eingestellt. Er liegt damit zwischen dem isoelektrischen Punkt des Kerneinweißes und des Cytoplasmaeiweißes. Da bei diesem pH-Wert nur der Kern und die Nissl – Schollen negative Ladungen tragen, liegt eine zeitunabhängige Färbung vor, d.h. Endpunktfärbung. 

Durchführung

Schnitte in Xylol entparaffinieren*

2 x 10 Min

Objektträger über die absteigende Alkoholreihe** bis Aqua dest. durch mehrmaliges Eintauchen

überführen

je ca. 1 Min.

Objektträger in Löffler´s Methylenblau  (pH 4,5) überführen

10 Min

Differenzierung der Färbung in Pufferlösung

 

Färbung mit 4% igem Ammoniummolybdat fixieren

5 Min

aufsteigende Alkoholreihe***, Xylol zum Entwässern, Aufhellen und Härten der Schnitte.

 

Eindecken mit wasserunlöslichem Einschlußmittel

 

*Entparaffiniert: Xylol: 100% - 2x schwenken; Isopropanol: 96%- 2x/70% - 1x insgesamt jeweils 3x

**Absteigende Alkoholreihe: mehrmaliges Eintauchen; umgekehrte Reihenfolge s.o.

***Aufsteigende Alkoholreihe: Xylol 70%/96%/100%

 

Färbeergebnis

Kerne

scharf-blau

Plasmazellen/Nisslsubstanz

tief blau

Erythrozyten

grünlich

Rest

entfärbt

Untersuchungsmaterial In Paraffin eingebettete Gewebeproben. Ziel der Untersuchung Die hier beschriebene Färbemethode dient unter anderem zur Darstellung von Nissl-Substanz in... mehr erfahren »
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Untersuchungsmaterial

In Paraffin eingebettete Gewebeproben.

Ziel der Untersuchung

Die hier beschriebene Färbemethode dient unter anderem zur Darstellung von Nissl-Substanz in Paraffinschnitten oder erythropoetischen Zellen in Blutausstrichen. Hier wird die Färbung an Paraffinschnitten erklärt.

Prinzip der Färbung

Der basische Teerfarbstoff Methylenblau verbindet sich elektropolar mit den negativ geladenen RNS der Nissl-Substanz und der DNS der Kerne. Es wird ein Puffer verwendet  (pH-Wert sauer), wobei nur Nissl-Substanz, Kerne und Nukleoli negative Ladungen tragen. Da die Farblösung mit einem Puffer versehen wird, liegt eine Endpunktfärbung vor. Der pH-Wert der Lösung wird auf 4,5 eingestellt. Er liegt damit zwischen dem isoelektrischen Punkt des Kerneinweißes und des Cytoplasmaeiweißes. Da bei diesem pH-Wert nur der Kern und die Nissl – Schollen negative Ladungen tragen, liegt eine zeitunabhängige Färbung vor, d.h. Endpunktfärbung. 

Durchführung

Schnitte in Xylol entparaffinieren*

2 x 10 Min

Objektträger über die absteigende Alkoholreihe** bis Aqua dest. durch mehrmaliges Eintauchen

überführen

je ca. 1 Min.

Objektträger in Löffler´s Methylenblau  (pH 4,5) überführen

10 Min

Differenzierung der Färbung in Pufferlösung

 

Färbung mit 4% igem Ammoniummolybdat fixieren

5 Min

aufsteigende Alkoholreihe***, Xylol zum Entwässern, Aufhellen und Härten der Schnitte.

 

Eindecken mit wasserunlöslichem Einschlußmittel

 

*Entparaffiniert: Xylol: 100% - 2x schwenken; Isopropanol: 96%- 2x/70% - 1x insgesamt jeweils 3x

**Absteigende Alkoholreihe: mehrmaliges Eintauchen; umgekehrte Reihenfolge s.o.

***Aufsteigende Alkoholreihe: Xylol 70%/96%/100%

 

Färbeergebnis

Kerne

scharf-blau

Plasmazellen/Nisslsubstanz

tief blau

Erythrozyten

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Löffler´s Methylenblau-Färbung (Pischinger)
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